fq文件中每一个位置上的所有read的碱基质量值的一个箱式图
显示了每个tile的平均质量的偏差。冷(blue)颜色质量值好,热(red)颜色表明质量差。在下面的例子中,你可以看到某些title的质量一致性的差。一个好的结果应该是全蓝色的。
每条序列的平均质量值的密度曲线图;好的数据质量会呈现一个偏的拖尾分布,表示绝大分read平均质量值都落到Q值高的部分
每个碱基位置上:ATGC含量的分布图;碱基类型分布检查用于检测有无AT、GC分离现象,由于RNA-Seq所测的序列为随机打断的cDNA片段,因随机性打断及碱基互补配对原则,理论上,G和C、A和T的含量每个测序循环上应分别相等,且整个测序过程稳定不变,呈水平线。
Note:
由于Reads 5’端的前几个碱基为随机引物序列,存在一定的偏好性,因此会在碱基分布图中出现前端波动较大的现象,属于正常情况。
GC含量分布图:此模块测量文件中每个序列的整个长度的GC内容,并将其与建模的正态分布的GC内容进行比较。
Note:人类物种GC含量范围:40%-60%
GC含量异常:可以排查数据中是否存在大量的核糖体rna序列,核糖体rna序列过多意味着测到的数据中有效数据含量少,不能满足后续分析
N含量分布图;N表示不能识别为ATGC中的任何一个碱基,为未知状态,碱基质量值Q值为0
N含量越多,说明数据质量越差
read长度分布图:表示测序read的长度分布密度曲线图;
rawdata 一般所有序列都是一个固定长度
过滤后的cleandata 的read 长度较短占比过高时应该考虑rawdata中数据是否存在大量接头,导致过滤后数据短片段占比过高,此时存在文库构建失败问题
序列重复性分布图;重复率过高提示该样本文库多样性少,即测得的read种类少,获得的基因序列有效信息少,可能影响后续定量准确性。
转录组数据:本身存在一定的read重复,qc报告非常容易出现警告或者红色xx,应该看具体的重复率,但重复率不应该过高比如超过70%。
过表达的reads
可能存在的情况:(原始数据存在接头的可能性高,可以看过滤后的数据qc报告)
1.来自高表达基因的片段,具有生物学意义
2.来自污染序列,导致文库中的这个序列比例异常高
3.文库检测到的序列多样性不高,重复率高
序列异常排查方向:
1.随机抽取fq文件中的2000条read,去NCBI做 blast比对,看是否有污染其他物种
2.过表达的read序列去做blast比对,查看其来源
3.过表达的read序列与文库构建的接头对比,看是否是接头
接头含量,表示序列中两端adapter的情况;软件内置了四种常用的测序接头序列, fastqc 有一个参数-a可以自定义接头序列
参数 | 描述 |
|---|---|
-j/--cores | 使用线程数,默认为1 |
-q/--quality | 切除质量得分低于设置值的序列。默认值20 |
--phred33/-- phred64 | 使用不同质量得分作为Phred得分标准。默认选项是phred33 |
-a /--adapter | 输入adapter序列,也可以不输入,软件会自动搜索可能性最高的平台对应的adapter。自动搜选的平台有三个,也可以直接设置参数输入这三个平台,分别是--illumina,--nextera和--small_rna |
--length | 长度小于设定值的reads将被丢弃,Default: 20 bp. --max_length 长度大于设定值的reads将被丢弃 |
--stringency | 限定最少与adaptor序列重叠的碱基数,默认接头序列:AGATCGGAAGAGC |
--paired | 对于双端测序的一对reads,如果其中一个不合格被剔除,另一个也将被剔除。 |
-o/--output_dir | 设定输出目录,必须是已存在的目录,否则运行将报错。 |
--fastqc | 当剪切结束后用默认选项对结果文件进行fastqc分析 |
--max_n | 去除含有N碱基数大于n的序列 |
ref:https://mp.weixin.qq.com/s/Tfo4kqKChJjk2ZHdsWjyuw
只对直接运行的任务有效,后台任务无效
① 提交任务:bash trim.sh
② 按 ctrl+z
只对直接运行的任务有效,后台任务无效
① 提交任务:bash trim.sh
② 按 ctrl+c
kill -9 %num:num为jobs命令返回ID
kill -9 PID:ps fx或者htop可得到PID任务编号)
① 提交任务:nohup bash trim.sh 1>trim.log 2>&1 &
② 使用 ps fx或者 htop 或者 jobs得到任务ID
bg %number 任务挂后台
fg %number 任务挂前台
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