

今天给大家介绍的是基于 Sentieon 软件开发的用于猪全基因组测序数据的自动化流程脚本。该流程实现了从原始测序数据(FASTQ)到变异检测结果(GVCF)以及joint calling的完整分析流程,支持多个测序平台和输出格式。
脚本支持原始测序数据(raw_fastq)、过滤后的测序数据(clean_fastq),进行质控、比对、排序、标记重复、生成质量评估指标,最终通过Haplotyper 算法进行变异检测输出 gVCF 文件,通过joint calling输出VCF文件。
测试猪样本测序深度9.98X,从FASTQ到VCF全流程分析最快用时14.74分钟,大幅缩短了猪全基因组WGS分析时间,有效加快动物的分子育种进程。
感谢Ampere Computing LLC 和比亚迪服务器部门对本次测试的大力支持!!!
1.1.1 下载地址
软件地址链接
模型下载链接(请转到VX查看链接)
#!/bin/bash
echo $0 \$SAMPLEID \$WORKDIR \$FASTQ_1 \$FASTQ_2 \$FASTA \$SUFFIX \$DATATYPE \$KEEP_CLEAN \$KEEP_BAM \$PLOIDY
set -euxo pipefailecho:打印脚本名及输入参数占位符,方便调试时确认参数顺序。
set -euxo pipefail:设置脚本执行规则,增强健壮性。
export SAMPLEID=$1
export WORKDIR=$2
export FASTQ_1=$3
export FASTQ_2=$4
export FASTA=$5
BSUFFIX=$6
TYPE=${7:-"raw"}
KEEP_CLEAN=${8:-keep}
KEEP_BAM=${9:-keep}
PLOIDY=${10:-2}
LOGFILE=$SAMPLEID.run.log
export root=/Path/sentieon/202503/sentieon-genomics-202503/bin/从命令行读取参数,包括样本 ID、工作目录、输入文件路径等。
部分参数设置默认值。
LOGFILE:定义日志文件名(样本 ID+.run.log)。
root:sentieon工具(基因组分析软件)的安装路径。
更详细的参数表格,如下表所示:

if [ "$BSUFFIX" = "bam" ] || [ "$BSUFFIX" = "cram" ] || [ "$BSUFFIX" = " " ]; then
echo "$BSUFFIX check"
else
die "Error: check 6th blank, BSUFFIX must be 'bam' or 'cram' or space"
fi检查BSUFFIX,只能是bam(二进制比对格式)、cram(压缩比对格式)或空格,否则报错退出。
if [ -e $LOGFILE ];then
export PLATFORM=$(awk '/Platform/{print $NF;exit}'$LOGFILE)
else
export count=$(zcat $FASTQ_1|head -n 1|awk '{print NF}')
if [ $count -eq 1 ];then
export PLATFORM="DNBSEQ"
elif [ $count == 2 ];then
export PLATFORM="ILLUMINA"
elif [ $count == 3 ];then
export PLATFORM="ILLUMINA"
else
echo"Unrecognized platform"
export PLATFORM="ILLUMINA"
fi
fi若日志文件已存在,从日志中提取测序平台(Platform字段)。
若日志不存在,通过 FASTQ 文件首行的字段数判断平台。
FAI=$FASTA.fai
if [ "$BSUFFIX" = "bam" ] || [ "$BSUFFIX" = "cram" ];then
export SUFFIX=$(awk -v preset=$BSUFFIX 'BEGIN{max=0}{if($2>max)max=$2}END{if(max>536870911){print "cram"}else{print preset}}' $FAI)
else
export SUFFIX=$(awk 'BEGIN{max=0}{if($2>max)max=$2}END{if(max>536870911){print "cram"}else{print "bam"}}' $FAI)
fi根据参考基因组索引文件($FASTA.fai)中最长序列的长度决定输出比对文件格式:
补充说明:对于单个染色体长度>536870911(约512MB)的物种,Sentieon软件可以切换至cram,不用因BAM 文件索引 (.bai) 的格式限制切割染色体。
export TMPDIR=$WORKDIR
export THREADS=$(nproc)
[ -e $WORKDIR ]||mkdir -p $WORKDIR
cd $WORKDIR
exec >>$LOGFILE 2>&1
echo "SampleID:" $SAMPLEID
echo "DataType:" $TYPE
……配置临时目录、线程数,确保工作目录存在,并将所有输出写入日志文件。
timer(){
start_time=$(date +%s)
eval $2 && touch $3
end_time=$(date +%s)
cost_time=$[ $end_time-$start_time ]
echo -e "TIMER: $1\t$(($cost_time/60)) min $(($cost_time%60)) s"
}用于记录每个分析步骤的开始/结束时间、耗时,并通过创建标记文件(如qc.ok)标记步骤完成,避免重复执行。
raw2clean(){
cmd="fastp -w 16 -i $FASTQ_1 -I $FASTQ_2 -o $clean1 -O $clean2 -j $SAMPLEID.qc.json -h $SAMPLEID.qc.html&&rm $FASTQ_1 $FASTQ_2"
timer raw2clean "$cmd" qc.ok
}raw2clean(){
cmd="fastp -w 16 -i $FASTQ_1 -o $clean1 -j $SAMPLEID.qc.json -h $SAMPLEID.qc.html&&rm $FASTQ_1"
timer raw2clean "$cmd" qc.ok
}使用fastp工具对原始 FASTQ 数据进行质控(过滤低质量reads、接头等),输出过滤后的 FASTQ 文件及质控报告文件(JSON/HTML)。
成功后创建qc.ok标记文件。
alignment(){
tag="@RG\tID:rg_$SAMPLEID\tSM:$SAMPLEID\tPL:$PLATFORM"
cmd="sentieon bwa mem -R \"$tag\" -t $THREADS -K 10000000 -x $ML_MODEL/bwa.model $FASTA $clean1 $clean2|sentieon util sort --temp_dir $TMPDIR -r $FASTA -o $SAMPLEID.sorted.$SUFFIX -t $THREADS --sam2bam -i -"
echo $cmd
timer alignment "$cmd" align.ok
}alignment(){
tag="@RG\tID:rg_$SAMPLEID\tSM:$SAMPLEID\tPL:$PLATFORM"
cmd="$root/sentieon bwa mem -R \"$tag\" -t $THREADS -K 10000000 $FASTA -x $ML_MODEL/bwa.model $clean1 |$root/sentieon util sort --temp_dir $TMPDIR -r $FASTA -o $SAMPLEID.sorted.$SUFFIX -t $THREADS --sam2bam -i -"
echo $cmd
timer alignment "$cmd" align.ok
}使用sentieon bwa turbo进行序列比对(基于BWA算法),添加Read Group信息(用于后续变异分析),并通过sentieon util sort对结果排序,输出sorted.bam或sorted.cram。
基于测序平台选择不同的机器学习模型($ML_MODEL)优化比对。
成功后创建align.ok标记文件。
metrics(){
cmd="sentieon driver --temp_dir $TMPDIR -r $FASTA -t $THREADS -i $SAMPLEID.sorted.$SUFFIX --algo WgsMetricsAlgo $SAMPLEID.WGS_METRICS.txt --algo MeanQualityByCycle $SAMPLEID.mq_metrics.txt --algo QualDistribution $SAMPLEID.qd_metrics.txt --algo GCBias --summary $SAMPLEID.gc_summary.txt $SAMPLEID.gc_metrics.txt --algo AlignmentStat $SAMPLEID.aln_metrics.txt --algo BaseDistributionByCycle $SAMPLEID.bd_metrics.txt --algo QualityYield $SAMPLEID.qy_metrics.txt --algo InsertSizeMetricAlgo $SAMPLEID.is_metrics.txt"
timer metrics "$cmd" metrics.ok
}使用sentieon driver计算多种测序质量指标,包括:
结果输出到多个质量指标的.txt文件,成功后创建metrics.ok。
dedup(){
cmd="sentieon driver -r $FASTA --temp_dir $TMPDIR -t $THREADS -i $SAMPLEID.sorted.$SUFFIX --algo LocusCollector --fun score_info $SAMPLEID.score.txt&&sentieon driver -r $FASTA -t $THREADS -i $SAMPLEID.sorted.$SUFFIX --algo Dedup --score_info $SAMPLEID.score.txt --metrics $SAMPLEID.dedup_metrics.txt $SAMPLEID.deduped.$SUFFIX&&rm $SAMPLEID.sorted.$SUFFIX* $SAMPLEID.score.txt*"
timer markdup "$cmd" markdup.ok
}标记重复序列分两步:
完成后删除中间文件(排序后的比对文件),创建markdup.ok。
bqsr(){
sentieon driver -t $THREADS -r $FASTA -i $SAMPLEID.deduped.$SUFFIX --algo QualCal -k $KNOWN_SITES $SAMPLEID.RECAL_DATA.TABLE
sentieon driver -t $THREADS -r $FASTA -i $SAMPLEID.deduped.$SUFFIX -q $SAMPLEID.RECAL_DATA.TABLE --algo QualCal -k $KNOWN_SITES $SAMPLEID.RECAL_DATA.TABLE.POST --algo ReadWriter $SAMPLEID.deduped.RECALIBRATED.$SUFFIX
timer markdup "$cmd" markdup.ok
}dnaseq(){
cmd="sentieon driver --temp_dir $TMPDIR -r $FASTA -t $THREADS -i $SAMPLEID.deduped.$SUFFIX --algo Haplotyper --emit_conf=30 --call_conf=30 --emit_mode gvcf --ploidy $PLOIDY $SAMPLEID.hc.gvcf.gz && md5sum $SAMPLEID.hc.gvcf.gz > $SAMPLEID.hc.gvcf.gz.md5"
timer Haplotyper "$cmd" hc.ok
}使用Haplotyper算法进行单倍型分析,生成 GVCF 文件。
计算 GVCF 文件的 MD5 ,确保文件完整性,成功后创建hc.ok。
#!/bin/bash
[ $# -eq 0 ]&&echo Usage: $(basename $0) \$FASTA \$GVCF_LIST \$NUM \$DATADIR&&exit
start_time=$(date +%s)如果脚本没有传入任何参数,则打印使用说明并退出。
使用方式:脚本名 FASTA文件 GVCF列表文件 NUM 数据目录
记录脚本开始执行的时间
set -euo pipefail-e: 任何命令失败则退出脚本。
-u: 使用未定义的变量时报错。
-o pipefail: 管道中任何一个命令失败则整个管道失败。
DATADIR=$4
FASTA=$1 #"$FASTA_DIR/genomeEN_split.fa"
GVCF_LIST=$2
NUM=$3$1: 参考基因组 FASTA 文件路径。
$2: 包含所有样本 GVCF 文件路径的列表文件。
$3: 用于命名输出文件的数字标识(如批次号)。
$4: 数据目录,用于存放输出文件。
NT=$(nproc) #number of threads to use in computation, set to number of cores in the server
WORKDIR="$DATADIR/JointCall-${NUM}"
[ -e $WORKDIR ]||mkdir -p $WORKDIR
#[ -e $file ]&&exit 0
cd $WORKDIR
LOGFILE=$WORKDIR/joint-call${NUM}_run.log
exec >$LOGFILE 2>&1NT: 获取当前系统的 CPU 核心数。
WORKDIR: 根据 NUM 创建唯一的工作目录。
如果目录不存在则创建,并进入该目录。
将所有标准输出和标准错误重定向到日志文件。
root=/APP/u22/x86_com/sentieon/202503/sentieon-genomics-202503
cat $GVCF_LIST|$root/bin/sentieon driver -r $FASTA --algo GVCFtyper \
$WORKDIR/output${NUM}-jc.vcf.gz - || { echo echo "GVCFtyper failed"; exit 1; }cat $GVCF_LIST: 读取 GVCF 文件列表。
sentieon driver: 调用 Sentieon 驱动程序。
-r $FASTA: 指定参考基因组。
--algo GVCFtyper: 使用 GVCFtyper 算法进行联合变异检测。
output${NUM}-jc.vcf.gz: 输出的压缩 VCF 文件。
如果命令失败,输出错误信息并退出。
end_time=$(date +%s)
cost_time=$[ $end_time-$start_time ]
echo "joint calling time is $(($cost_time/60))min $(($cost_time%60))s"
echo "the Joint-calling done at `date +%H:%M:%S` !!!"计算脚本运行的总时间,并以“分:秒”格式输出。最后输出完成时间。
该脚本实现了DNA测序数据从原始测序数据(FASTQ)到变异检测结果(GVCF)以及joint calling的完整分析流程,支持Illumina/DNBSEQ平台,可配置输出格式(BAM/CRAM)和中间文件保留策略,通过标记文件和日志确保流程可进行追溯,适用于大规模基因组变异检测场景。特点包括:
要运行此脚本,需要预先安装好 sentieon、fastp等软件,并准备好对应的模型文件 bundle。
使用上述脚本对猪全基因组测序数据分析的测序结果,具体样本信息如下表所示:

参考基因组下载
wget -c -t 0 --wait=5 --progress=bar:force http://ftp.ensembl.org/pub/release-108/fasta/sus_scrofa/dna/Sus_scrofa.Sscrofa11.1.dna.toplevel.fa.gz测试硬件配置
测试结果
使用本文流程对猪的全基因组测序数据进行变异检测分析,下表为不同CPU核数下的计算时间和资源调用情况:

本次测试在不同的线程数上进行性能的比较。从数据中可以明显看出,随着线程数的增加,变异检测的整体效率显著提升。从FastQ到gVCF全流程分析最快用时14.74分钟,大幅缩短了猪的全基因组WGS分析时间,有效加快动物的分子育种进程。
Sentieon在不断地优化算法的运行效率,为科研工作者提供更快速、更经济的基因检测方案。若您刚好有需要检测的数据,不妨来申请试用Sentieon吧!
更多下载链接等内容,请关注VX:毅硕科技,了解更多内容。
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