为了鉴定内层细胞成分和潜在的脊椎动物同源物,建立了单细胞分辨率的空间分辨图谱。scRNA-seq数据集由10017个有效细胞组成,使用Seurat工作流进行处理。初步定义了scRNA-seq数据集的细胞组成。多种细胞类型,包括免疫细胞、分泌性上皮细胞和血细胞,被发现具有细胞cluster特异性标记。对于Stereo-seq,通过空间条形码DNA纳米球(DNB)检测的表达谱与在文库构建中捕获的单链DNA染色光学图像对齐。根据不同的细胞分布特征,分别在组织密集区和稀疏区采用了方形划分和细胞分离两种细胞分离策略。使用这些方法,我们将DNB点分离成细胞unit,这代表了真实细胞形态的折衷反映。细胞分离后,在6个Stereo-seq切片中获得18371个细胞单位,并进行细胞类型注释。
接下来,整合了来自6个10-μm厚度切片的三个scRNA-seq和Stereo-seq生物重复的数据集,并基于cluster特异性基因表达重新注释了细胞类型。然后将注释投影到空间lanscope上以创建细胞图谱。
单细胞数据和Stereo-seq数据的相似性比较,证明scRNAseq和空间转录组数据集之间的相似性,其实就是证明Stereo-seq数据直接可以当做单细胞数据来用。
结果表明,HLR是血液和免疫细胞产生和维持的潜在中枢。它可能代表了一种与脊椎动物的血液和免疫系统具有同源性的原始淋巴系统。此外,HLR可能作为干细胞中心,促进免疫和血液系统中功能性细胞的产生,可能在补充血液供应中发挥关键作用。
除上述区域外,还对致密组织区域的细胞成分和基因表达进行了详细分析。结合HLR的细胞成分和先前对群落海鞘的研究,揭示了内壁的区域细胞成分。在这个图谱中定义的细胞群不仅与之前对内层区域的理解一致,而且还提供了对咽器官进化的见解。
为了获得最终的空间基因表达矩阵,对dnb进行了数据对应和细胞分配。根据单链DNA染色图像中的细胞核进行目标分割,然后将这些目标的轮廓覆盖在相应对齐的基因表达空间图像上。 为此,首先进行图像配准,将单链DNA图像与基因表达矩阵中的坐标对齐。然后通过对每个DNB的唯一分子标识符计数进行颜色编码,将空间基因表达矩阵转换为二维空间图像。同时,对单链DNA图像进行一系列预处理,包括背景噪声滤波和局部对比度增强。然后用DNB的距离(715 nm)代替像素单位,将这些图像转换为真实的物理尺寸。随后,预处理图像数据集与TrakEM2算法对齐,其中组织形态被手动识别并用于特征匹配。基于仿射矩阵对单链DNA图像进行变换,匹配基因表达的空间坐标。 接下来,使用CellProfiler软件检测和分割转化单链DNA图像中的细胞对象。简而言之,使用全局Otsu阈值策略确定核位置,而无需手动注释。使用Mutex Watershed算法自动确定像素是否属于特定的核,从而创建细胞边界。这些分割单元的边界具有预设的对象直径,范围从6到40像素。然后将与每个DNB位置相关的RNA数据根据它们是否位于分割的细胞边界内分配给单个细胞对象。对于密集核所在且无法检测到边界的区域,手动掩盖这些区域并保留15个分区,每个分区的宽度和高度约为10 μm,而不是细胞分割。利用细胞和基因表达的对齐坐标,基因表达矩阵进一步聚集成假定的细胞,准备进行下游分析。
还是要借助单细胞数据注释空间数据
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