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在传统的测序技术中,上机测序的样本是由多个细胞构成的,最后分析得出的结论也只是基于所有细胞的平均水平,但是我们知道细胞是具有异质性的,对于大脑等复杂组织而言,其细胞类型是多样的;对于肿瘤细胞而言,其细胞异质性更是尤为突出,为了克服细胞异质性的影响,提高科学研究的精度,科学家在不断尝试,希望从单个细胞的水平去进行测序分析。
从2009年开始,各种单细胞技术不断出现,最初由于其通量低,操作繁琐,价格高等一系列因素,导致其应用并不广泛,近年来随着技术的不断发展,通量在不断提升,价格也在不断下降,单细胞测序技术越来越成熟,出现了很多成熟的平台,比如本文要介绍的10X Genomics。
单细胞测序的应用领域非常多,比如CNV检测,ATAC_seq等, 其中引起广泛关注的,就是单细胞在转录组学的应用,即single cell RNA sequencing, 简称scRNA-seq。官方提供的流程如下
10X Genomics公司也为之提供了一系列配套的仪器和软件,最核心的就是分离细胞,制备文库的机器,叫做Chromium Controller, 图片如下
核心是通过构建GEM
体系来实现单个细胞的分离,基本结构如下所示,呈现出一个双十字的结构
首先是Gel Beads,其中包含了几十万个bead, 类似探针,用于捕获细胞中的特定序列,结构如下所示
由4个组成部分,第一段叫做read1, 其实就是adapter序列,用于后续的上机测序,第二段是barcode
, 长度为16bp, 用于区分不同的细胞,第三段是UMI
, 用于区分不用的转录本序列,长度为12bp, 第四段在不同的试剂盒中对应不同的序列,但是作用是相同的,都是用于捕获目的序列,对于转录组测序而言,就是一个30bp的ployT结构,用户捕获有ployA尾的转录本。
1个Gel在通过第一个通道时,会加入一个细胞和后续反应所需的酶,然后通过第二层通道,第二层通道就是一层油,通过之后,就会形成一个油滴包裹的细胞和酶的混合物,就是一个GEM
。
后续的文库制备示意如下,对于每个单独的GEM
, 其包含的beads用于捕获该细胞中的转录本序列,然后进行反转录,PCR扩增等过程
最后通过酶切,末端修饰等过程,构建一个可以用于illumina上机测序的文库
该文库的片段构成如下
Read1和Read2就是Truseq的两个adapter序列,中间的灰色横线就是实际能够检测到的转录本序列,对于150bp的读长而言,这段序列的长度为91bp。
本文重点介绍了10X genomic的单细胞转录组文库的构建过程,后续会进行相关分析的介绍。
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